นาโน แอสตาแซนธิน ช่วยปรับปรุงสีกุ้ง ช่วยเพิ่มมูลค่าตลาด
สีของกุ้งขึ้นอยู่กับเม็ดสีแคโรทีนอยด์ (โดยเฉพาะ แอสตาแซนธิน) และมีผลกระทบอย่างมากต่อมูลค่าทางการตลาดของกุ้ง ในการศึกษาครั้งนี้ เราพบว่าลักษณะที่ปรากฏของสีในกุ้งกุลาดำ (Penaeus monodon) เมื่อประเมินโดยใช้มาตราส่วนการเกรดเชิงพาณิชย์ ไม่ค่อยมีความสัมพันธ์ที่ดีกับปริมาณแคโรทีนอยด์ทั้งหมดเสมอไป นอกจากนี้เราสังเกตว่าลักษณะภายนอกยังได้รับผลกระทบจากสีของตู้กุ้งด้วย เมื่อเลี้ยงกุ้งในถังสีดำหรือสีขาวเป็นเวลา 28 วัน ถึงแม้จะมีระดับแอสตาแซนธิน รวมโดยเฉลี่ยใกล้เคียงกัน (29–33 ไมโครกรัมต่อกรัมหาง) กุ้งที่เลี้ยงในถังสีดำจะมีสีส้มหรือแดงมากกว่าอย่างเห็นได้ชัดเมื่อปรุงสุกเมื่อเทียบกับกุ้งที่เลี้ยงในถังสีขาว เม็ดสีมีความเข้มข้นส่วนใหญ่อยู่ในกะโหลกศีรษะ หนังกำพร้าช่องท้อง และโครงกระดูกภายนอกช่องท้อง กล้องจุลทรรศน์แบบใช้แสงแสดงให้เห็นการกระจายเม็ดสีที่สม่ำเสมอในหนังกำพร้าของกุ้งที่มีสีสันสดใสมากกว่าเมื่อเปรียบเทียบกับบริเวณที่มีเม็ดสีเข้มข้นในกุ้งที่มีสีอ่อนกว่า แอสตาแซนธิน ที่ไม่ได้เป็นเอสเทอร์เป็นแคโรทีนอยด์หลักที่มีอยู่ในทุกส่วนของร่างกายของกุ้งจากถังดำ (50%) โดยที่เหลือประกอบด้วย แอสตาแซนธิน แบบโมโนและไดสเตอร์ อย่างไรก็ตาม สำหรับกุ้งจากตู้สีขาว แอสตาแซนธิน ที่ไม่ผ่านกระบวนการเอสเทอร์มีเพียง 12–13% เท่านั้น โดยโมโนเอสเทอร์มีสัดส่วนประมาณ 60% ของทั้งหมดที่มีอยู่ ในการทดลองแยกกัน เราแสดงให้เห็นว่าการเปลี่ยนแปลงสีของสิ่งแวดล้อมทำให้สีของกุ้งเปลี่ยนแปลงอย่างรวดเร็ว เมื่อย้ายกุ้งจากถังสีขาวไปยังถังสีดำ คะแนนจะเพิ่มขึ้นอย่างมีนัยสำคัญภายใน 1 ชั่วโมงโดยที่ปริมาณ แอสตาแซนธิน ไม่เปลี่ยนแปลง การปรับปรุงสียังคงเพิ่มขึ้นอย่างต่อเนื่องมากกว่า 168 ชั่วโมง การย้ายกุ้งจากตู้ดำไปยังตู้ขาวส่งผลให้คะแนนลดลง แต่การเปลี่ยนแปลงเกิดขึ้นช้ากว่ามาก งานวิจัยนี้แนะนำว่า หากกุ้งมี แอสตาแซนธิน ในปริมาณที่เพียงพอในอาหาร การปรับปรุงรูปลักษณ์โดยรวมของกุ้ง (ทั้งแบบมีชีวิตและปรุงสุก) อาจทำได้โดยการปรับสีของการเก็บเกี่ยว
1.แนะนำ
สีของกุ้งถือเป็นปัจจัยที่สำคัญที่สุดประการหนึ่งในการตัดสินใจซื้อกุ้งของผู้บริโภค และส่งผลอย่างมากต่อมูลค่าทางการตลาดของกุ้งด้วย ในออสเตรเลีย กุ้งกุลาดำปรุงสุก (Penaeus monodon) มักได้รับการประเมินสีโดยใช้แผนภูมิการจัดระดับสีแบบอัตนัยซึ่งมีคะแนนตั้งแต่ 1 ถึง 12 ซึ่งสะท้อนถึงสีที่มีระดับต่ำถึงสูง (Aqua-Marine Marketing Pty Ltd., Kippa-Ring, ควีนส์แลนด์) โดยทั่วไปแล้วกุ้งที่มีสีสวยจะมีราคาสูงกว่ากุ้งสีอ่อนประมาณ 2–4 ดอลลาร์/กก. และโดยทั่วไปแล้ว กุ้งที่มีสีไม่ดีจะไม่สามารถขายได้ในราคาตลาดที่ยอมรับได้ และจะถูกแช่แข็งเก็บไว้จนกว่าความต้องการจะมีมากขึ้น สีของกุ้งขึ้นอยู่กับปริมาณของ แอสตาแซนธิน (3,3′-dihydroxy-β,β-carotene-4,4′-dione) ที่มีอยู่ในเนื้อเยื่อภายนอกเป็นหลัก โดยเฉพาะในโครงกระดูกภายนอกและในหนังกำพร้าระหว่างกล้ามเนื้อหน้าท้องและโครงกระดูกภายนอก (Menasveta et al., 1993; Boonyaratpalin et al., 2001) โดยทั่วไป แอสตาแซนธิน มีอยู่ในรูปแบบอิสระและในรูปแบบเอสเทอร์ไรเซชัน (โมโนเอสเทอร์ และไดเอสเทอร์) กับกรดไขมัน (Okada et al., 1994) แคโรทีนอยด์เหล่านี้อาจปรากฏอยู่ในรูปแบบแคโรทีโนโปรตีน โดยเฉพาะในโครงกระดูกภายนอก และเมื่อแยกออกจากโปรตีนแล้ว แคโรทีนอยด์จะเปลี่ยนสีจากสีน้ำเงินเป็นสีแดง ซึ่งสามารถเห็นได้ชัดเจนเมื่อกุ้งสุก (Britton et al., 1981)
ยังมีรายงานปริมาณแคโรทีนอยด์อื่นๆ เล็กน้อย รวมทั้งลูทีนและซีแซนทีนด้วย (Pan et al., 2001; Sachindra et al., 2005) นอกเหนือจากการสร้างเม็ดสีแล้ว แคโรทีนอยด์ยังได้รับการเสนอว่ามีบทบาทในหลายๆ หน้าที่สำคัญในสัตว์จำพวกกุ้ง เช่น การให้ฤทธิ์ของโปรวิตามินเอ (Miki et al., 1982) การเพิ่มความทนทานต่อความเครียด (Torrissen, 1984; Chien et al., 2003) และในกระบวนการพัฒนาและการแยกความแตกต่างต่างๆ ตามที่ Linan-Cabello et al. สรุปไว้ (2545).
แหล่งที่มาของ แอสตาแซนธิน ในกุ้งเช่นเดียวกับสัตว์อื่นๆ มาจากอาหาร ส่วนในกุ้งป่า แอสตาแซนธิน ส่วนใหญ่จะมาจากการแปลงจากแคโรทีนอยด์อื่นๆ ที่กินเข้าไป เช่น ซีแซนธิน และเบตาแคโรทีน (Katayama et al., 1971) ดังนั้นการมีอยู่ของแอสตาแซนธินในกุ้งจึงขึ้นอยู่กับความสามารถในการดูดซึม ขนส่ง และสะสมในตำแหน่งทางกายวิภาคที่เจาะจง สำหรับกุ้งที่เลี้ยงไว้ การเติมแอสตาแซนธินสังเคราะห์ลงในอาหารถือเป็นต้นทุนเพิ่มเติม และมักต้องปรับปริมาณและเวลาในการเสริมอาหารเพื่อให้ได้ระดับสีที่ต้องการ (Chien และ Jeng, 1992) บ่อยครั้งที่ผู้ผลิตประสบความยากลำบากในการคาดเดาความเข้มข้นของอาหารที่เหมาะสมที่สุดเนื่องจากสาหร่ายที่มีอยู่ในบ่อ รวมถึงสีทางพันธุกรรมที่แตกต่างกันของกุ้งแต่ละตัว และความแตกต่างของแถบที่เห็นได้ชัดระหว่างกุ้ง
ในขั้นตอนการวิจัยของเราเพื่อกำหนดสีที่เหมาะสมที่สุดของกุ้งที่เลี้ยงไว้ในฟาร์ม เราได้วัดปริมาณ แอสตาแซนธิน ทั้งหมดในกุ้งจำนวนมาก และสังเกตว่าปริมาณนี้ไม่ได้สัมพันธ์กับสีจริงเสมอไป เราคาดเดาว่าความแตกต่างในลักษณะที่ปรากฏนี้อาจขึ้นอยู่กับตำแหน่งของเม็ดสีในส่วนต่างๆ ของร่างกายกุ้ง (Sachindra et al., 2005) นอกจากนี้ ยังเป็นที่ทราบกันดีว่ากุ้งสามารถเปลี่ยนรูปลักษณ์ภายนอกให้กลมกลืนกับสีของสิ่งแวดล้อมได้ โดยอาศัยการเคลื่อนตัวของเม็ดสีในเม็ดสีในชั้นหนังกำพร้าใต้โครงกระดูกภายนอก (Fingerman, 1965; Robison and Charlton, 1973) การเปลี่ยนแปลงสีทางสัณฐานวิทยาและสรีรวิทยาได้รับการอธิบายไว้ในสัตว์จำพวกกุ้งซึ่งเกี่ยวข้องกับการเปลี่ยนแปลงอย่างช้าๆ และรวดเร็วอันเนื่องมาจากปัจจัยด้านสิ่งแวดล้อมหรือฮอร์โมน ตามลำดับ (Rao, 1985; Melville-Smith et al., 2003) การเคลื่อนไหวของเม็ดสีในกุ้งดิบอาจส่งผลโดยตรงต่อสีของกุ้งที่ปรุงสุก ในการศึกษาที่อธิบายไว้ที่นี่ เราได้รายงานเกี่ยวกับการเปลี่ยนแปลงของเม็ดสีที่พบเห็นในแต่ละบุคคลในกลุ่มกุ้ง ตำแหน่งของเม็ดสีในส่วนประกอบต่างๆ ของร่างกาย และผลกระทบจากแสงแวดล้อม
2.วัสดุและวิธีการ
กุ้งที่ใช้ในการศึกษาครั้งนี้ได้มาจากกุ้งทดลองและจากฟาร์มเชิงพาณิชย์ กุ้งไม่ได้รับการประเมินระยะการลอกคราบ และใช้กุ้งที่มีน้ำหนักต่างกัน อย่างไรก็ตาม สำหรับการทดสอบการเปรียบเทียบโดยเฉพาะ กุ้งมีน้ำหนักใกล้เคียงกัน
2.1 การเลี้ยงกุ้งทดลอง
กุ้งทดลอง (P. monodon) ได้มาจากกุ้งที่เก็บรักษาไว้ในห้องปฏิบัติการวิจัยทางทะเลและบรรยากาศ (CMAR) ของ CSIRO ในเมืองคลีฟแลนด์ จนกว่าจะจำเป็นสำหรับการทดลอง กุ้งจะถูกเก็บไว้ในถังไฟเบอร์กลาสขนาด 2,500 ลิตร น้ำทะเลถูกสูบผ่านถังด้วยอัตรา 1.2 ลิตรต่อนาที เพื่อรักษาอุณหภูมิและความเค็มของน้ำที่ประมาณ 28°C และ 32‰ ตามลำดับ รักษาระยะเวลาแสงก่อนเริ่มการทดลองไว้ที่ 12 ชั่วโมงสว่าง : 12 ชั่วโมงมืด กุ้งได้รับอาหารเม็ดเชิงพาณิชย์ (Lucky Star, Taiwan Hung Kuo Industrial Pty Ltd.) สองครั้งต่อวัน มีการตรวจสอบปริมาณแอสตาแซนธินที่แท้จริงและพบว่ามีประมาณ 40 มิลลิกรัมต่ออาหาร 1 กิโลกรัม
2.2 กุ้งแช่แข็งเชิงพาณิชย์
กุ้งลายเสือดำต้มทั้งตัวแช่แข็ง (น้ำหนักประมาณ 20–50 กรัม) ได้รับจากฟาร์มเชิงพาณิชย์สองแห่งในควีนส์แลนด์
2.3 การทดสอบที่ 1 — ผลของสีสิ่งแวดล้อม
กุ้ง P. monodon จากสต็อกเดียวกันได้รับการเพาะเลี้ยงร่วมกันในถังซับสีดำในห้องปฏิบัติการและให้อาหารกุ้งเชิงพาณิชย์พื้นฐานที่มี แอสตาแซนธิน 40 มก. ต่ออาหาร 1 กก. (อาหารและรายละเอียดอื่นๆ ตามที่ระบุไว้ข้างต้น) ความเข้มแสง (Iso-Tech ILM350, เครื่องวัดแสง) ที่ระยะห่าง 10 ซม. จากผิวน้ำอยู่ที่ประมาณ 10lx ในวันที่ 0 กุ้งครึ่งหนึ่ง (n = 5) ถูกจับแบบสุ่มและย้ายไปยังถังที่มีเส้นสีขาวและบำรุงรักษาภายใต้ความเข้มแสงเช่นเดียวกับก่อนหน้านี้ กุ้งทั้งหมดยังคงได้รับอาหารเชิงพาณิชย์ชนิดเดียวกันและรักษาสภาพแสงให้คงที่สำหรับแต่ละกลุ่ม ในวันที่ 28 กุ้งถูกนำออกจากทั้งสองถังและวางไว้ในส่วนผสมของน้ำทะเลและน้ำแข็งเป็นเวลา 5 นาทีจนกระทั่งตาย หลังจากนั้นจึงนำกุ้งออกและต้มในน้ำทะเลกรองเป็นเวลา 2 นาที น้ำหนักเฉลี่ยของกุ้งหลังจากปรุงอาหารคือ 9.27±0.99 กรัม แม้ว่าน้ำหนักเฉลี่ยของกุ้งในตู้ดำจะน้อยกว่ากุ้งในตู้ขาว (8.10 ± 1.20 และ 10.43 ± 1.51 กรัม ตามลำดับ) แต่ความแตกต่างเหล่านี้ไม่มีนัยสำคัญและสะท้อนถึงผลลัพธ์ของการคัดแยกแบบสุ่มในวันที่ 0 กุ้งถูกถ่ายรูป จากนั้นแช่แข็งและเก็บไว้ที่ -20 °C จนกว่าจะต้องวิเคราะห์
2.4. ทดสอบ 2 – ความเร็วในการเปลี่ยนสี
กุ้ง P. monodon ขนาดใกล้เคียงกันจากสต็อกเดียวกันและเลี้ยงร่วมกันในถังเส้นสีดำจะถูกแยกแบบสุ่มไปอยู่ในถังเส้นสีดำหรือเส้นสีขาวที่ CMAR คลีฟแลนด์เป็นเวลา 28 วัน (n = 96) ในช่วงนี้ สัตว์แต่ละตัวจะได้รับอาหารเหมือนกัน ซึ่งมี แอสตาแซนธิน 40 มก. ต่ออาหาร 1 กก. ในวันที่ทำการทดลอง เวลา 09.00 น. ย้ายกุ้งจากตู้ไปไว้ในตู้ที่มีสีตรงข้าม จากนั้นในแต่ละจุดเวลา 0, 1, 3, 6, 12, 24, 72, 168 และ 336 ชม. กุ้ง 6 ตัวจะถูกนำออกแล้วนำไปวางในส่วนผสมของน้ำทะเลและน้ำแข็งเป็นเวลา 5 นาทีจนกว่าจะตาย จากนั้นนำออกและต้มในน้ำทะเลกรองเป็นเวลา 2 นาที จากนั้นจึงนำไปแช่เย็นในน้ำแข็ง กุ้งถูกถ่ายรูปและแช่แข็งและเก็บไว้ที่ -20°C จนกว่าจะจำเป็นสำหรับการวิเคราะห์ ขั้นตอนการให้แสงสว่างดำเนินต่อไปตลอดช่วงการทดลอง ซึ่งหมายความว่ากุ้งในเวลา 12.00 น. จะถูกทำให้มืดเป็นเวลาประมาณ 4 ชั่วโมง
2.5. การประเมินสีกุ้งแบบอัตนัย
กุ้งทั้งหมด ทั้งเชิงพาณิชย์และทดลอง ได้รับการประเมินสีโดยจัดแสดงภายใต้แสงไฟฟลูออเรสเซนต์มาตรฐาน บนโต๊ะขนาดใหญ่ในห้องปฏิบัติการแปรรูปอาหารที่ตั้งไว้ที่อุณหภูมิอากาศ 10°C การประเมินสีเชิงอัตนัยดำเนินการโดยใช้บัตรคะแนนการให้คะแนน (1 ถึง 12 สำหรับสีอ่อนที่สุดไปจนถึงเข้มที่สุด) สำหรับ P. monodon (Aqua-Marine Marketing Pty Ltd., Kippa-Ring, Queensland) มีการใช้กลุ่มตัวอย่างจำนวน 7 คนสำหรับการทดลองที่ 1 และกลุ่มตัวอย่างจำนวน 14 คนสำหรับการทดลองที่ 2 แม้ว่ากลุ่มตัวอย่างจะไม่ได้รับการฝึกอบรมให้ตัดสินสีของกุ้ง แต่พวกเขาก็มีประสบการณ์เกี่ยวกับคุณลักษณะต่างๆ ของอาหาร (รวมถึงสี) และได้รับจุดยึดสำหรับค่าที่มากที่สุด
2.6. ความสัมพันธ์ระหว่างคะแนนเกรดกับปริมาณ แอสตาแซนธิน
กุ้งเชิงพาณิชย์ที่ปรุงแล้ว (น้ำหนักเฉลี่ย = 34.9 กรัม [ช่วง 22 ถึง 51 กรัม], n = 61) ได้รับการเกรดด้วยสีตามการประเมินเชิงอัตนัยตามที่อธิบายไว้ในส่วนที่ 2.5 และใช้เพื่อตรวจสอบปริมาณ แอสตาแซนธิน ทั้งหมดและการกระจายทั่วร่างกายกุ้งในระดับต่างๆ (ดูรูปที่ 2 และ 3) เมื่อมาถึงห้องปฏิบัติการ กุ้งแช่แข็งจะถูกละลาย และในกรณีนี้ จะมีการให้คะแนนโดยใช้คณะกรรมการ 3 คน เพื่อหาฉันทามติสำหรับกุ้งแต่ละตัว จากนั้นจึงคัดกุ้งตามคะแนนและยืนยันการประเมินเบื้องต้น จากนั้นกุ้งแต่ละตัวจะถูกผ่าออกเป็นโครงกระดูกภายนอก หนังกำพร้า หัวอก และต่อมย่อยอาหารเพื่อสกัด แอสตาแซนธิน
2.7. การวิเคราะห์แคโรทีน
กุ้งจะถูกชั่งน้ำหนักและผ่าตามนี้ ขั้นตอนทั้งหมด รวมทั้งการสกัด ดำเนินการภายใต้สภาวะที่มีความเข้มแสงต่ำในห้องปฏิบัติการที่มืด ในกรณีส่วนใหญ่ และเว้นแต่จะระบุไว้เป็นอย่างอื่น การเปรียบเทียบระหว่างกลุ่มกุ้งจะทำจากเม็ดสีที่มีอยู่ใน “หางกุ้ง” ซึ่งรวมถึงหนังกำพร้าของกล้ามเนื้อหน้าท้องร่วมกับโครงกระดูกภายนอกส่วนหน้าท้อง รวมถึงยูโรพอดและเทลสัน ทำได้โดยการเอาหัวออกแล้วแยกโครงกระดูกภายนอกออกจากกล้ามเนื้อหน้าท้อง ชั้นเม็ดสีหนังกำพร้าถูกแยกออกจากกล้ามเนื้ออย่างระมัดระวังเพื่อไม่ให้มีส่วนประกอบใดๆ เข้าไปในทางเดินอาหาร ในทุกกรณี ยกเว้นการตรวจสอบการกระจายตัวของเม็ดสี (ตารางที่ 1) กล้ามเนื้อหน้าท้องไม่ได้ถูกกำจัดออกเนื่องจากไม่ก่อให้เกิดเม็ดสีในกุ้ง เมื่อมีการระบุไว้ การวิเคราะห์แคโรทีนอยด์ยังดำเนินการกับส่วนประกอบที่ผ่าตัดแต่ละส่วน เช่น โครงกระดูกภายนอกด้านท้อง หนังกำพร้าด้านท้อง หัว และต่อมย่อยอาหาร ชั่งน้ำหนักเนื้อเยื่อแต่ละชิ้น สับ และสกัดสามครั้งด้วยอะซิโตน 20 มล. ที่อุณหภูมิ 2°C โดยปล่อยทิ้งไว้ข้ามคืนระหว่างการสกัดแต่ละครั้ง เศษกุ้งที่เหลือหลังจากขั้นตอนการสกัดที่ครอบคลุมนี้แทบจะไม่มีเม็ดสีเลย ปรับสารสกัดรวมให้มีปริมาตรรวม 60 มล. และเติม H2O 10 มล. และ n-hexane 5 มล. ผสมให้เข้ากันและปล่อยทิ้งไว้ให้แยกกัน ชั้นบนถูกทิ้งไปและชั้นล่างถูกล้างสองครั้งด้วย H2O 5 มล. และ n-hexane 5 มล. ชั้นบนที่รวมประกอบด้วยเม็ดสีจะถูกระเหยจนแห้งภายใต้ไนโตรเจน จากนั้นจึงละลายอีกครั้งใน n-hexane 20 มล. ความเข้มข้นของแอสตาแซนธินในสารสกัดถูกกำหนดโดยการวัดค่าการดูดกลืนแสงที่ 477 นาโนเมตร โดยใช้ค่าสัมประสิทธิ์การสูญเสียโมลาร์ 2172 ในคิวเวตต์ขนาด 1 เซนติเมตร มาตรฐาน แอสตาแซนธิน ได้รับจากบริษัท Sigma Chemical เมืองเซนต์หลุยส์ รัฐมิสซูรี ประเทศสหรัฐอเมริกา และมาตรฐานลูทีนได้รับจากบริษัท Extrasynthese เมืองเจเนย์ ประเทศฝรั่งเศส จากการวิเคราะห์ก่อนหน้านี้ เราทราบว่า แอสตาแซนธิน และเอสเทอร์ของ แอสตาแซนธิน คิดเป็นประมาณร้อยละ 95 ของแคโรทีนอยด์ทั้งหมด ดังนั้นจึงไม่ได้ระบุแคโรทีนอยด์ที่มีปริมาณน้อยกว่า เช่น ลูทีน แต่จะมีส่วนทำให้คิดเป็นทั้งหมด ตัวอย่างทั้งหมดถูกเก็บไว้ในที่มืด ภายใต้ไนโตรเจนที่อุณหภูมิ -20 °C จนกว่าจะต้องมีการวิเคราะห์เพิ่มเติม
ผลลัพธ์สำหรับปริมาณ แอสตาแซนธิน แสดงเป็น μg/g น้ำหนักเปียกของส่วนประกอบกุ้ง หรือเป็นเปอร์เซ็นต์ของการกระจายตัวของเม็ดสีในส่วนประกอบแต่ละส่วน สำหรับกุ้งแต่ละตัว ปริมาณแอสตาแซนธินทั้งหมด (μg) ที่สกัดจากแต่ละตำแหน่งทางกายวิภาคจะถูกกำหนด และการกระจายแบบสัมพัทธ์จะถูกแสดงเป็นเปอร์เซ็นต์
2.8. การแยกแอสตาแซนธินและ แอสตาแซนธิน เอสเทอร์ด้วย HPLC
สารสกัดแคโรทีนอยด์ n-เฮกเซนถูกถ่ายโอนไปยังขวดตัวอย่างสีน้ำตาลเพื่อแยกด้วย HPLC บนระบบ Waters ซึ่งประกอบด้วยปั๊มรุ่น 600 อุปกรณ์ฉีดอัตโนมัติรุ่น 717 และตัวตรวจจับอาร์เรย์โฟโตไดโอดรุ่น 996 แอสตาแซนธิน ถูกกำหนดที่ 477 นาโนเมตร ระบบได้รับการควบคุมด้วยซอฟต์แวร์ Waters Empower (2003) การแยกทำได้โดยใช้คอลัมน์ Luna 5μm C18 (2) 100 Å 250 mm×4.6 mm (Phenomenex #00G-4252-E0) ที่ติดตั้งตลับหมึกการ์ด (Phenomenex #AJ0-4287) ระบบตัวทำละลายแบบไล่ระดับที่มีอัตราการไหล 1.5 มล./นาที มีดังนี้: ตัวทำละลาย A (เมทานอล:H20, 80:20,v/v); ตัวทำละลาย B (เอทิลอะซีเตท) เป็นสิ่งที่สำคัญตามที่ Wade et al. อธิบายไว้ (2548).
2.9. กล้องจุลทรรศน์
ส่วนหนึ่งของหนังกำพร้าจากส่วนท้องแรกของกุ้งแต่ละตัวจะถูกกำจัดออกจากกล้ามเนื้อหน้าท้องอย่างระมัดระวังหลังจากที่เอาโครงกระดูกภายนอกออก วางแผ่นเซลล์บนสไลด์กล้องจุลทรรศน์และปิดด้วยน้ำเกลือใต้สไลด์ กล้องจุลทรรศน์โอลิมปัส รุ่น BH2 มองเห็นโครมาโทฟอร์ และได้ภาพโดยใช้กล้อง Nikon Coolpix รุ่น 995 โดยใช้กำลังขยาย 10 × 4 ระยะห่างระหว่างจุดศูนย์กลางของเม็ดสีวัดเป็นไมโครเมตรในระยะ และระยะห่างเฉลี่ย (±SE) พบว่าอยู่ที่ 380± 9.21 ไมโครเมตร สำหรับกุ้งที่มีน้ำหนัก 20 ถึง 30 กรัม
2.10. การวิเคราะห์ทางสถิติ
ใช้ระดับความเชื่อมั่น 5% เพื่อเปรียบเทียบความแตกต่างอย่างมีนัยสำคัญระหว่างค่าเฉลี่ย (p≤0.05) โดยใช้การทดสอบ t ของนักเรียนแบบจับคู่ (Microsoft Excel, XP) สำหรับข้อมูลที่นำเสนอในรูปที่ 1 เราได้ตรวจสอบความสัมพันธ์ระหว่างน้ำหนักกุ้งและความกว้างของกุ้งที่ส่วนท้องที่ 2 ด้วยแบบจำลองเชิงเส้น แบบจำลองกำลังสอง และแบบจำลองกำลังสาม โดยใช้เกณฑ์ข้อมูล Akaike (AIC) จึงเลือกโมเดลเชิงเส้นให้เป็นโมเดลที่เหมาะสมที่สุดสำหรับชุดข้อมูล เนื่องจากมีค่า AIC ต่ำที่สุด (Sakamoto et al, 1986)
3.ผลการศึกษาและการอภิปราย
3.1. ความสัมพันธ์ระหว่างคะแนนเกรดกับปริมาณ แอสตาแซนธิน
การกำหนดปริมาณแคโรทีนอยด์ในกุ้งทั้งตัวสามารถให้ข้อบ่งชี้ระดับแคโรทีนอยด์ในอาหารที่เหมาะสมต่อการเจริญเติบโตหรือสุขภาพได้อย่างน่าพอใจ แต่การทำเช่นนี้อาจไม่ใช่วิธีที่ดีที่สุดในการมองเห็นสีของกุ้ง เนื่องจากเม็ดสีบางชนิดอาจอยู่ในบริเวณและอวัยวะต่างๆ เช่น ต่อมย่อยอาหาร จึงไม่ส่งผลต่อรูปลักษณ์ภายนอก นอกจากนี้ เรายังต้องเผชิญกับน้ำหนักกุ้งที่ค่อนข้างหลากหลายที่พบในการทดลองเหล่านี้ เราถกเถียงกันบนพื้นฐานของความสัมพันธ์ระหว่างน้ำหนักและพื้นที่ภาพที่ประเมินจากความกว้างของร่างกายว่า ปริมาณเม็ดสีที่แสดงบนน้ำหนักของกล้ามเนื้อหน้าท้องบวกกับโครงกระดูกภายนอกช่องท้องจะให้ชุดหน่วยที่น่าพอใจ เพื่อสนับสนุนสิ่งนี้ เราพบความสัมพันธ์เชิงเส้น (R2 = 0.623) ระหว่างความกว้างของส่วนท้องที่สอง (และจึงแสดงถึงพื้นที่ผิว) และน้ำหนักกุ้ง (รูปที่ 1) บนพื้นฐานนี้ เราแสดงน้ำหนักของเม็ดสีที่สกัด (μg) ต่อน้ำหนักเปียกของกล้ามเนื้อหน้าท้องบวกกับโครงกระดูกภายนอกช่องท้อง
อย่างไรก็ตาม ในระหว่างการวิจัยของเราเพื่อพิจารณาความเข้มข้นที่เหมาะสมของเม็ดสีในอาหารเพื่อให้ได้สีที่ดี เราได้วัดปริมาณ แอสตาแซนธิน ทั้งหมด (โดยแสดงบนพื้นฐานของกล้ามเนื้อหน้าท้องและน้ำหนักโครงกระดูกภายนอกช่องท้อง) ในกุ้งจำนวนมาก และสังเกตว่าปริมาณดังกล่าวไม่สัมพันธ์กันดีกับลักษณะภายนอก สิ่งนี้ได้รับการสาธิตเพิ่มเติมโดยการวัดปริมาณแอสตาแซนธินในกุ้งที่ได้รับการจำแนกประเภทตามสายตาและอัตวิสัยเป็นเกรดต่างๆ โดยใช้แผนภูมิการจัดระดับสี คะแนนเฉลี่ยของการจัดระดับกุ้งอยู่ระหว่าง 6 ถึง 11 ความสัมพันธ์ระหว่างคะแนนการจัดระดับกับปริมาณ แอสตาแซนธิน ทั้งหมดแสดงไว้ในรูปที่ 2 จะเห็นได้ว่าคะแนนการจัดระดับสำหรับสีหรือลักษณะภายนอกไม่มีความเกี่ยวข้องอย่างใกล้ชิดกับปริมาณแอสตาแซนธินที่วัดได้ ตัวอย่างเช่น ในจุดที่ 9 ปริมาณแอสตาแซนธินมีตั้งแต่ 5 ถึง 25 ไมโครกรัมต่อหางกุ้ง 1 กรัม ดังนั้นจะต้องมีคำอธิบายอื่นสำหรับความแตกต่างที่สังเกตได้
3.2. การกระจายตัวของเม็ดสีในกุ้ง
การกระจายตัวของแอสตาแซนธินทั้งหมดในส่วนประกอบแสดงไว้ในรูปที่ 3 สำหรับแต่ละคะแนนตั้งแต่ 6 ถึง 11 (ช่วงกุ้งที่ได้) โดยพื้นฐานแล้วแอสตาแซนธินทั้งหมดจะกระจายเกือบสม่ำเสมอระหว่างโครงกระดูกภายนอกส่วนท้อง หนังกำพร้าส่วนท้อง และเซฟาโลทอแรกซ์ (หนังกำพร้าและโครงกระดูกภายนอกไม่แยกจากกัน) โดยมีเพียง 1–2% เท่านั้นที่มีอยู่ในต่อมย่อยอาหาร ผลการค้นพบเหล่านี้โดยพื้นฐานแล้วคล้ายคลึงกับผลลัพธ์ที่สังเกตได้โดย Negre-Sandargues et al. ในปี 1993 และ Paibulkichakul et al. ในปี 2008 การกระจายตัวของเม็ดสีไม่มีการเปลี่ยนแปลงอย่างมีนัยสำคัญในคะแนนที่ตรวจสอบที่นี่ ควรสังเกตว่าในสถานการณ์อื่นๆ เมื่อกุ้งกำลังจะลอกคราบ เปอร์เซ็นต์ของแอสตาแซนธินทั้งหมดที่มีอยู่ในโครงกระดูกภายนอกจะลดลงอย่างเห็นได้ชัดเนื่องจากเม็ดสีถูกเคลื่อนกลับเข้าไปในหนังกำพร้า ดังที่ได้สังเกตพบในกุ้งมังกรแดงตะวันตก (Wade et al., 2005)
3.3. ผลของสีพื้นหลังต่อการกระจายตัวของ แอสตาแซนธิน ในกุ้งสด
กุ้งที่เคยเลี้ยงรวมกันภายใต้สภาพเดียวกันจะเปลี่ยนรูปลักษณ์หลังจากถูกแยกออกจากกันและเลี้ยงในตู้สีดำหรือสีขาว แม้ว่าจะได้รับอาหารชนิดเดียวกันก็ตาม ความแตกต่างเหล่านี้จะเห็นชัดเจนที่สุดในกุ้งดิบ ปลาจากตู้สีดำจะมีสีน้ำเงินเข้มหรือน้ำตาลเมื่อเทียบกับสีอ่อนของปลาจากตู้สีขาว ปริมาณ แอสตาแซนธิน รวม (ตารางที่ 1) ของกุ้งที่เลี้ยงในตู้สีดำหรือสีขาวเป็นเวลา 28 วันนั้นไม่แตกต่างกันอย่างมีนัยสำคัญ (33.3 ไมโครกรัมต่อกรัมหางกุ้งในตู้สีดำ เทียบกับ 29.1 ไมโครกรัมต่อกรัมหางกุ้งในตู้สีขาว, p≥0.05) และไม่ทำให้เกิดความแตกต่างของสีที่สังเกตเห็นได้ อย่างไรก็ตาม มีความแตกต่างที่ชัดเจนในสีที่ปรุงแล้ว (รูปที่ 4) โดยกุ้งที่เลี้ยงในตู้สีดำจะมีสีส้มหรือแดงมากกว่ากุ้งที่เลี้ยงในตู้สีขาว เมื่อตรวจสอบโครงกระดูกภายนอก/หนังกำพร้าอย่างใกล้ชิด (รูปที่ 5) พบว่ากุ้งที่มีสีเข้มจะมีการกระจายเม็ดสีอย่างสม่ำเสมอมากกว่ากุ้งที่มีสีอ่อน ซึ่งมีเม็ดสีที่เข้มข้นในจุดเล็กๆ (เม็ดสี)
การกระจายตัวของแอสตาแซนธินในส่วนประกอบต่างๆ ของร่างกายยังถูกกำหนดในกุ้งหลังจากผ่านไป 28 วันภายใต้เงื่อนไขสีพื้นหลังแต่ละสี (ตารางที่ 1) เห็นได้ชัดว่ากุ้งที่เลี้ยงในตู้สีดำมีปริมาณแอสตาแซนธินรวมในช่องเซฟาโลโธแรกซ์ (42.7%) สูงกว่า (p≤0.05) เมื่อเทียบกับกุ้งที่เลี้ยงในตู้สีขาว (34.6%) ถึงแม้ว่าหนังกำพร้าหน้าท้องจะสูงกว่า (p≤0.05) ในกุ้งที่เลี้ยงในตู้สีขาว (39.3% เทียบกับ 31.9%) ก็ตาม
เม็ดสีแคโรทีนอยด์หลักในกุ้งที่ช่วยให้กุ้งมีสีสัน ได้แก่ แอสตาแซนธิน (ที่ไม่ถูกเอสเทอร์) และแอสตาแซนธินเอสเทอร์ (โมโนเอสเทอร์หรือไดเอสเทอร์) ร่วมกับแคโรทีนอยด์อื่นๆ ในปริมาณเล็กน้อย เช่น ลูทีน และเบตาแคโรทีน (Okada et al., 1994; Boonyaratpalin et al., 2001) เราศึกษาการกระจายตัวของเม็ดสีเหล่านี้ในสามตำแหน่งที่แตกต่างกัน ได้แก่ หนังกำพร้าบริเวณช่องท้อง โครงกระดูกภายนอกบริเวณช่องท้อง และเซฟาโลทอแรกซ์ในกุ้งที่เลี้ยงในถังสีดำหรือสีขาวเป็นเวลา 28 วัน (ตารางที่ 2) โดยพื้นฐานแล้ว เราพบว่าไม่ว่าตำแหน่งของร่างกายจะเป็นอย่างไร การกระจายตัวเป็นเปอร์เซ็นต์ของเม็ดสีแต่ละสีจะแตกต่างกันมาก ขึ้นอยู่กับว่ากุ้งนั้นเลี้ยงในตู้สีดำหรือสีขาว สำหรับกุ้งที่เลี้ยงในถังดำ แอสตาแซนธินในรูปแบบที่ไม่ผ่านกระบวนการเอสเทอร์มีสัดส่วนประมาณร้อยละ 50 ของแคโรทีนอยด์ทั้งหมด ส่วนที่เหลือประกอบด้วยโมโนเอสเทอร์ของแอสตาแซนธินและไดเอสเทอร์ของแอสตาแซนธินเป็นหลักในสัดส่วนที่เท่ากัน (ประมาณร้อยละ 20 แต่ละตัว) พร้อมด้วยลูทีนจำนวนเล็กน้อย (5–7%) อย่างไรก็ตาม สำหรับกุ้งที่เลี้ยงในตู้ขาว การกระจายจะแตกต่างกันมาก แอสตาแซนธินที่ไม่ถูกเอสเทอร์ถูกลดลงอย่างมาก คิดเป็นเพียงประมาณ 12% ของปริมาณแคโรทีนอยด์ทั้งหมด ในทางตรงกันข้าม โมโนเอสเทอร์แอสตาแซนธินเพิ่มขึ้นจากประมาณ 20% เป็น 60% ของทั้งหมด สัดส่วนของไดเอสเทอร์แอสตาแซนธินไม่เปลี่ยนแปลงอย่างมีนัยสำคัญ
ดังนั้นการศึกษานี้จึงชี้ให้เห็นว่ารูปแบบของแอสตาแซนธินที่มีอยู่ในเนื้อเยื่อรอบนอกของกุ้งขึ้นอยู่กับสภาพแสงพื้นหลัง ดังนั้นจึงมีการเสนอว่าในสภาพแวดล้อมที่มืด โมโนเอสเทอร์ของแอสตาแซนธินจำนวนมากจะถูกไฮโดรไลซ์ ในขณะที่ภายใต้สภาวะแสง แอสตาแซนธินอิสระจะถูกเอสเทอร์ฟายเออร์ด้วยกรดไขมันเพื่อสร้างโมโนเอสเทอร์ กรดไขมันเฉพาะที่เกี่ยวข้องกับกระบวนการนี้มีความน่าสนใจเป็นพิเศษและกำลังอยู่ระหว่างการตรวจสอบอยู่ แม้ว่าผลการค้นพบของเราจะเกี่ยวข้องกับสีพื้นหลังเป็นหลัก แต่ก็ดูเหมือนว่าจะแตกต่างจากผลการค้นพบของ You et al. (2006) ซึ่งศึกษาผลกระทบของแหล่งกำเนิดแสงและรูปแบบแสงที่แตกต่างกันต่อสีและอัตราการเจริญเติบโตของกุ้ง พวกเขาใช้กุ้งแวนนาไมสายพันธุ์ Litopenaeus พบว่ากุ้งที่ได้รับแสงที่มีความเข้มสูงที่สุดจะมีสีสันลำตัวมากที่สุด และแนะนำว่าภายใต้เงื่อนไขเหล่านี้ จำเป็นต้องมีแอสตาแซนธินในปริมาณสูง เพื่อลดความเสียหายที่อาจเกิดขึ้นจากแสง UV สาเหตุของการเพิ่มขึ้นของเม็ดสียังคงไม่ชัดเจน แต่ก็อาจเกี่ยวข้องกับการเจริญเติบโตที่มากขึ้นของไฟโตแพลงก์ตอน แบคทีเรีย ฯลฯ ในน้ำ ดังนั้น จึงทำให้มีสารตั้งต้นของแอสตาแซนธินมากขึ้นภายใต้สภาวะแสงที่เข้มข้นกว่า (Tseng et al., 1998) นอกจากนี้ ประสิทธิภาพในการดูดซึมและการสะสมอาจสูงขึ้นในกุ้งที่เลี้ยงภายใต้สภาวะที่มีแสงสว่างมากขึ้น
ในการศึกษาสภาพแวดล้อมแบบควบคุมโดยใช้ลูกกุ้งมังกร (Jasus edwardsii) Stuart และคณะ (1996) ไม่สามารถแสดงผลใดๆ ที่สำคัญของสีพื้นผิว (หินสีดำหรือกรวดสีขาว) ต่อสีโครงกระดูกภายนอกได้ การศึกษาครั้งนี้สังเกตช่วงเวลาการเจริญเติบโตตลอดทั้งปีภายใต้เงื่อนไขเฉพาะ และสรุปได้ว่าความแตกต่างตามประวัติที่รายงานโดยผู้เลี้ยงล็อบสเตอร์เชิงพาณิชย์น่าจะเป็นผลมาจากความแตกต่างทางพันธุกรรม
3.4. อัตราการเปลี่ยนแปลงสี
ในการทดลองก่อนการทดลอง กุ้งได้รับการบำรุงรักษาภายใต้เงื่อนไขสีพื้นหลังที่กำหนดเป็นเวลา 28 วันก่อนการประเมิน มีการดำเนินการทดสอบต่อไปนี้เพื่อพิจารณาอัตราการเปลี่ยนสี เนื่องจากสามารถส่งผลกระทบอย่างมีนัยสำคัญต่อการใช้งานเชิงพาณิชย์ของกระบวนการได้ ในการทดสอบนี้ กุ้งได้รับการบำรุงรักษาภายใต้เงื่อนไขสีสิ่งแวดล้อมที่กำหนดเป็นเวลา 28 วัน ก่อนที่จะเปลี่ยนเงื่อนไขเมื่อเวลา 0 ชั่วโมง ณ จุดนี้ กุ้งจากถังสีขาวมีปริมาณแอสตาแซนธินรวมใกล้เคียงกัน (p≥0.05) กับกุ้งจากถังสีดำ (32.1± 2.20μg/g หางกุ้ง และ 36.7± 2.16 μg/g หางกุ้ง ตามลำดับ) เพื่อให้ได้ข้อมูลที่แม่นยำยิ่งขึ้น (โดยเพิ่มจำนวนขึ้น) เกี่ยวกับปริมาณ แอสตาแซนธิน ในกุ้งจากถังทั้งสองนี้ กุ้งทั้งหมดที่ใช้ในช่วง 168 ชั่วโมงได้รับการวิเคราะห์ ค่าโดยรวมอยู่ที่ 35.1± 1.096 μg/g หางกุ้งสำหรับกุ้งที่ถ่ายโอนไปยังถังขาว และ 36.7± 1.108 μg/g หางกุ้งสำหรับกุ้งที่ถ่ายโอนไปยังถังดำ (ดูรูปที่ 6) แม้ว่าปริมาณเม็ดสีรวมของกลุ่มกุ้งทั้งสองกลุ่มจะใกล้เคียงกันที่ 0 ชั่วโมง แต่กลับมีความแตกต่างกันอย่างมากในสีของกุ้งดิบและกุ้งสุก เมื่อให้เกรดโดยผู้เข้าร่วม กุ้งปรุงสุกจากถังสีขาวจะมีสีอ่อนกว่าอย่างมีนัยสำคัญ (p≤0.001) โดยมีคะแนนเฉลี่ยประมาณ 7.0 ± 0.306 เมื่อเทียบกับ 10.8 ± 0.225 ของกุ้งจากถังสีดำ (รูปที่ 6)
อย่างไรก็ตาม ภายใน 1 ชั่วโมงหลังจากถ่ายโอนกุ้งสดจากถังสีขาวไปยังถังสีดำ เม็ดสีจะเพิ่มขึ้นอย่างมีนัยสำคัญ และเมื่อกุ้งสุกแล้ว สีแดงของกุ้งได้รับการประเมินโดยคณะกรรมการเป็น 8.8 ± 0.147 ซึ่งแตกต่างจากกุ้งที่ถูกนำออกจากตู้ขาวในเวลา 0 (p = 0.0148) เมื่อเวลาผ่านไป แนวโน้มนี้จะยังคงดำเนินต่อไป โดยเพิ่มขึ้นเป็นประมาณ 10 จุดใน 72 และ 168 ชั่วโมงหลังจากการเคลื่อนไหว การย้ายกุ้งจากตู้ดำไปยังตู้ขาวก็ส่งผลให้เกิดการเปลี่ยนแปลงของสีเช่นกัน โดยกุ้งจะมีสีอ่อนลง แต่ความแตกต่างใน 1 ชั่วโมงแรก (p = 0.189) และ 12 ชั่วโมง (p = 0.024) ไม่มากเท่ากับที่สังเกตได้จากการย้ายจากตู้ขาวไปยังตู้ดำ อย่างไรก็ตาม ภายใน 168 ชั่วโมง คะแนนได้ลดลงจากประมาณ 11 เหลือประมาณ 7.5 เมื่อเปลี่ยนจากกลุ่มสีดำเป็นสีขาว
ผลการค้นพบเหล่านี้บ่งชี้ว่าการเปลี่ยนแปลงสีเกิดขึ้นค่อนข้างรวดเร็วและมีแนวโน้มว่าเป็นผลมาจากการเปลี่ยนแปลงในเซลล์เม็ดสีตามที่ระบุไว้ข้างต้น (รูปที่ 5) สันนิษฐานว่าการเปลี่ยนสีเกิดขึ้นค่อนข้างรวดเร็ว เนื่องจากกุ้งจำเป็นต้องปรับตัวให้เข้ากับสภาพแวดล้อมที่แตกต่างกันโดยการพรางตัว (Fingerman, 1965) การใช้กล้องจุลทรรศน์แบบใช้แสงในการผ่าตัดหนังกำพร้าจากส่วนท้องส่วนแรกของกุ้งแสดงให้เห็นว่ามีการเปลี่ยนแปลงทางสัณฐานวิทยาอย่างเห็นได้ชัดในช่วงเวลาสั้นๆ เมื่อกุ้งถูกย้ายจากสภาพแวดล้อมหนึ่งไปสู่อีกสภาพแวดล้อมหนึ่ง (รูปที่ 7) การตรวจสอบชั้นหนังกำพร้าของกุ้งที่เลี้ยงไว้ในถังสีขาวจนถึงเวลา 0 ชั่วโมง (รูปที่ 7a) เผยให้เห็นเซลล์เม็ดสีขนาดเล็กที่อัดแน่นอยู่ เมื่อสังเกตเห็นหนังกำพร้าที่คล้ายกันจากกุ้งที่ถูกย้ายไปยังถังดำและทิ้งไว้เป็นเวลา 3 ชั่วโมงหรือ 7 วัน (รูปที่ 7c และ e ตามลำดับ) พบว่ามีการกระจายตัวของเม็ดสีไปทั่วเม็ดสี และเมื่อถึงวันที่ 7 เม็ดสีจะครอบครองพื้นผิวส่วนใหญ่ ซึ่งอยู่ภายในเม็ดสีรูปดาว ลำดับในรูปที่ 7 (b, d และ f) แสดงให้เห็นว่าสิ่งตรงข้ามเกิดขึ้นเมื่อกุ้งถูกถ่ายโอนจากถังดำไปยังถังขาว เม็ดสีที่กระจายตัว (รูปที่ 7b) มีความเข้มข้นมากขึ้นเล็กน้อยหลังจาก 3 ชั่วโมง (รูปที่ 7d) และมีความเข้มข้นอย่างแน่นหนาหลังจาก 7 วัน (รูปที่ 7f) เราได้แสดงให้เห็นแล้วว่าระดับเอสเทอริฟิเคชันของ แอสตาแซนธิน นั้นดูเหมือนจะขึ้นอยู่กับสีพื้นหลัง และมีความเป็นไปได้ที่รูปแบบทางเคมีที่เปลี่ยนแปลงจะกำหนดตำแหน่งของ แอสตาแซนธิน ในเซลล์เม็ดสี
รูปที่ 7 กล้องจุลทรรศน์แบบใช้แสงของหนังกำพร้าที่แยกออกจากส่วนท้องส่วนแรกของกุ้ง แสดงให้เห็นเซลล์เม็ดสีในจุดเวลาต่าง ๆ หลังจากการถ่ายโอนระหว่างถัง (จากสีขาวเป็นสีดำ; a, 0h, c, 3h, e, 7 วัน และจากสีดำเป็นสีขาว; b, 0h, d, 3h และ f, 7 วัน) อย่างไรก็ตาม กำลังขยายโดยรวมจะแตกต่างกันในแต่ละภาพ โดยระยะห่างเฉลี่ยระหว่างจุดศูนย์กลางของเซลล์เม็ดสีอยู่ที่ประมาณ 380 μm
4. บทสรุป
การสร้างสีถือเป็นลักษณะทางการค้าที่สำคัญสำหรับการทำตลาดกุ้ง แม้ว่าเม็ดสีธรรมชาติและเม็ดสีสังเคราะห์จะเป็นองค์ประกอบสำคัญของสูตรอาหารกุ้งและได้รับการปรับแต่งเพื่อให้สีของกุ้งเหมาะสมที่สุด แต่ก็พบว่ามีสีที่แตกต่างกันมาก จากการศึกษาครั้งนี้ เราสรุปได้ว่า เหตุผลอย่างน้อยส่วนหนึ่งของการเปลี่ยนแปลงนี้คือความสามารถของกุ้งในการพรางตัว ปกปิด หรือเปิดเผยเม็ดสี แอสตาแซนธิน โดยการเคลื่อนไหวภายในเม็ดสีในหนังกำพร้า เราเสนอว่าในสภาพแวดล้อมที่มีแสง เม็ดสีจะเข้มข้นและกุ้งจะดูสว่างกว่าเมื่อกุ้งอยู่ในสภาพแวดล้อมที่มืดกว่าซึ่งเม็ดสีจะกระจายตัวมากขึ้น ที่สำคัญ มีการเสนอว่ารูปแบบทางเคมีของ แอสตาแซนธิน จะเปลี่ยนไปขณะที่เคลื่อนตัวภายในเซลล์เม็ดสีของหนังกำพร้า โดยกลายเป็นเอสเทอร์ด้วยกรดไขมัน หรืออีกทางหนึ่งคือ ไฮโดรไลซ์เป็น แอสตาแซนธิน อิสระ ขณะที่เคลื่อนตัวจากสถานะควบแน่นไปเป็นสถานะกระจัดกระจาย (ตามลำดับ) เนื่องจากกุ้งจะเปลี่ยนสีค่อนข้างเร็วเมื่อสัมผัสกับสีดำหรือพื้นหลังสีเข้ม วิธีดังกล่าวจึงถือเป็นวิธีง่ายๆ ให้กับอุตสาหกรรมกุ้งในการเพิ่มสีของกุ้งและลดความแปรปรวน โดยไม่ต้องมีต้นทุนอาหารเพิ่มเติม ดังนั้นการพิจารณาสภาพสีพื้นหลังจึงอาจส่งผลกระทบอย่างมีนัยสำคัญต่อมูลค่าตลาดของกุ้ง
R.K. Tume, A.L. Sikes, S. Tabrett , D.M. Smith
a CSIRO, Food Futures National Research Flagship
b CSIRO, Food and Nutritional Sciences, PO Box 3312, Tingalpa DC, Queensland 4173, Australia
c CSIRO, Marine and Atmospheric Research, Cleveland, Queensland 4163, Australia